Чиста олія Saposhnikovia divaricata для виготовлення свічок та мила, оптовий дифузор, ефірна олія, нова для дифузорів для язичкового пальника

короткий опис:

2.1. Підготовка СДЕ

Кореневища SD були придбані у вигляді сушеної трави у компанії Hanherb Co. (Гурі, Корея). Рослинну сировину таксономічно підтвердив доктор Го-Я Чой з Корейського інституту східної медицини (KIOM). Зразок ваучера (номер 2014 SDE-6) був депонований у Корейському гербарії стандартних рослинних ресурсів. Висушені кореневища SD (320 г) двічі екстрагували 70% етанолом (з 2-годинним зворотним холодильником), а потім екстракт концентрували під зниженим тиском. Відвар фільтрували, ліофілізували та зберігали при 4°C. Вихід сухого екстракту з неочищених вихідних матеріалів становив 48,13% (мас./мас.).

2.2. Кількісний аналіз високоефективною рідинною хроматографією (ВЕРХ)

Хроматографічний аналіз проводили за допомогою системи ВЕРХ (Waters Co., Мілфорд, Массачусетс, США) та фотодіодного матричного детектора. Для ВЕРХ-аналізу SDE первинним...O-стандарт глюкозилциміфугіну було придбано в Корейському інституті просування традиційної медицини (Кьонсан, Корея), тасек-О-глюкозилгамаудол та 4′-O-β-D-глюкозил-5-O-метилвісамінол були виділені в нашій лабораторії та ідентифіковані за допомогою спектрального аналізу, головним чином за допомогою ЯМР та МС.

Зразки SDE (0,1 мг) розчиняли у 70% етанолі (10 мл). Хроматографічне розділення проводили на колонці XSelect HSS T3 C18 (4,6 × 250 мм, 5μм, Waters Co., Мілфорд, Массачусетс, США). Рухома фаза складалася з ацетонітрилу (A) та 0,1% оцтової кислоти у воді (B) зі швидкістю потоку 1,0 мл/хв. Використовували багатоступеневу градієнтну програму наступним чином: 5% A (0 хв), 5–20% A (0–10 хв), 20% A (10–23 хв) та 20–65% A (23–40 хв). Довжина хвилі детектування сканувалася при 210–400 нм та реєструвалася при 254 нм. Об'єм ін'єкції становив 10,0μL. Стандартні розчини для визначення трьох хромонів були приготовані з кінцевою концентрацією 7,781 мг/мл (первинно-O-глюкозилциміфугін), 31,125 мг/мл (4′-O-β-D-глюкозил-5-O-метилвісамінол) та 31,125 мг/мл (сек-О-глюкозилгамаудол) у метанолі та зберігали при 4°C.

2.3. Оцінка протизапальної активностіУ пробірці

2.3.1. Культивування клітин та обробка зразків

Клітини RAW 264.7 були отримані з Американської колекції типових культур (ATCC, Манассас, Вірджинія, США) та вирощені в середовищі DMEM, що містило 1% антибіотиків та 5,5% FBS. Клітини інкубували у зволоженій атмосфері з 5% CO2 при 37°C. Для стимуляції клітин середовище замінювали свіжим середовищем DMEM та ліпополісахаридом (LPS, Sigma-Aldrich Chemical Co., Сент-Луїс, Міссурі, США) при 1...μг/мл додавали у присутності або відсутності SDE (200 або 400μг/мл) протягом додаткових 24 годин.

2.3.2. Визначення оксиду азоту (NO), простагландину E2 (PGE2), фактора некрозу пухлини-α(ФНП-α) та продукування інтерлейкіну-6 (IL-6)

Клітини обробляли SDE та стимулювали LPS протягом 24 годин. Продукцію NO аналізували шляхом вимірювання нітритів за допомогою реактиву Грісса згідно з попереднім дослідженням [12]. Секреція запальних цитокінів PGE2, TNF-α, а IL-6 визначали за допомогою набору ELISA (R&D systems) згідно з інструкціями виробника. Вплив SDE на продукцію NO та цитокінів визначали при 540 нм або 450 нм за допомогою Wallac EnVision.™мікропланшетний рідер (PerkinElmer).

2.4. Оцінка антиостеоартритної активностіУ живому середовищі

2.4.1. Тварини

Самців щурів Sprague-Dawley (віком 7 тижнів) придбали у Samtako Inc. (Осан, Корея) та утримували в контрольованих умовах з 12-годинним циклом світло/темрява при°C та% вологості. Щурам забезпечували лабораторний раціон та водудосхочуУсі експериментальні процедури були виконані відповідно до рекомендацій Національних інститутів охорони здоров'я (NIH) та схвалені Комітетом з догляду за тваринами та їх використання Університету Теджон (Теджон, Республіка Корея).

2.4.2. Індукція остеоартриту з міокардіоідною ідіопатією (МІА) у щурів

Тварин було рандомізовано та розподілено на групи лікування перед початком дослідження (на групу). Розчин MIA (3 мг/50μ1 л 0,9% фізіологічного розчину) безпосередньо вводили у внутрішньосуглобовий простір правого коліна під анестезією, викликаною сумішшю кетаміну та ксилазину. Щурів випадковим чином розділили на чотири групи: (1) група з фізіологічним розчином без ін'єкції MIA, (2) група з MIA та ін'єкцією MIA, (3) група, що отримувала SDE (200 мг/кг) з ін'єкцією MIA, та (4) група, що отримувала індометацин (IM) (2 мг/кг) з ін'єкцією MIA. Щурам перорально вводили SDE та IM за 1 тиждень до ін'єкції MIA протягом 4 тижнів. Дозування SDE та IM, що використовувалося в цьому дослідженні, базувалося на дозі, що використовувалася в попередніх дослідженнях [10,13,14].

2.4.3. Вимірювання розподілу ваги на задніх лапах

Після індукції остеоартриту початковий баланс у здатності задніх лап до навантаження було порушено. Для оцінки змін у толерантності до навантаження використовували тестер інвалідності (Linton instrumentation, Норфолк, Велика Британія). Щурів обережно поміщали у вимірювальну камеру. Силу навантаження, що створюється задньою кінцівкою, усереднювали протягом 3 секунд. Коефіцієнт розподілу ваги розраховували за таким рівнянням: [вага на правій задній кінцівці / (вага на правій задній кінцівці + вага на лівій задній кінцівці)] × 100 [15].

2.4.4. Вимірювання рівнів цитокінів у сироватці крові

Зразки крові центрифугували при 1500 g протягом 10 хвилин за температури 4°C; потім сироватку збирали та зберігали при температурі -70°C до використання. Рівні IL-1β, IL-6, TNF-α, а ПГЕ2 у сироватці крові вимірювали за допомогою наборів ELISA від R&D Systems (Міннеаполіс, Міннесота, США) згідно з інструкціями виробника.

2.4.5. Кількісний аналіз ПЛР у реальному часі

Загальну РНК екстрагували з тканини колінного суглоба за допомогою реагенту TRI® (Sigma-Aldrich, Сент-Луїс, Міссурі, США), зворотно транскрибували в кДНК та ампліфікували за допомогою ПЛР за допомогою набору TM One Step RT PCR з SYBR green (Applied Biosystems, Гранд-Айленд, Нью-Йорк, США). Кількісну ПЛР у реальному часі проводили за допомогою системи Applied Biosystems 7500 Real-Time PCR (Applied Biosystems, Гранд-Айленд, Нью-Йорк, США). Послідовності праймерів та послідовність зондів наведено в таблиці.1Аліквоти зразків кДНК та рівну кількість кДНК GAPDH ампліфікували за допомогою універсальної ПЛР-мастер-суміші TaqMan®, що містила ДНК-полімеразу, згідно з інструкціями виробника (Applied Biosystems, Фостер, Каліфорнія, США). Умови ПЛР становили 2 хв при 50°C, 10 хв при 94°C, 15 с при 95°C та 1 хв при 60°C протягом 40 циклів. Концентрацію цільового гена визначали за допомогою методу порівняльного Ct (порогове число циклів у точці перетину між графіком ампліфікації та порогом) згідно з інструкціями виробника.

Ціна франко-борт:0,5–9 999 доларів США за штуку

Мінімальна кількість замовлення:100 штук/штук

Можливість постачання:10000 штук/штук на місяць

Надіслати нам електронного листа

Деталі продукту

Теги продукту

Остеоартрит (ОА) є найчастішим захворюванням опорно-рухового апарату та найпоширенішим дегенеративним захворюванням суглобів у людей похилого віку [...1]. ОА – це стан, частково спричинений травмою, втратою структури та функції хряща, а також порушенням регуляції прозапальних та протизапальних шляхів [2,3]. Це в першу чергу вражає суглобовий хрящ та субхондральну кістку синовіальних суглобів і призводить до порушення функції суглобів, що спричиняє біль під час навантаження, включаючи ходьбу та стояння [4].

Немає ліків від остеоартриту, оскільки дуже важко відновити хрящ після його руйнування [5]. Цілями лікування є полегшення болю, підтримка або покращення рухливості суглобів, збільшення сили суглобів та мінімізація інвалідизуючих наслідків захворювання. Фармакологічне лікування остеоартриту спрямоване на зменшення болю, щоб покращити функцію суглобів та якість життя пацієнта. Хоча руйнування хряща є основною подією при остеоартриті, деградація колагену є фундаментальним явищем, яке визначає незворотне прогресування остеоартриту у поєднанні із запаленням [6,7Очікується, що лікування з протизапальною та хондропротекторною активністю полегшить біль та збереже цілісність матриксу у пацієнтів з остеоартритом.

Отже, зменшення запалення, ймовірно, буде корисним при лікуванні остеоартриту. Нещодавні дослідження показують захисну роль рослинних ресурсів у прогресуванні остеоартриту, з точки зору пом'якшення запалення хондроцитів та подальшого руйнування хряща, завдяки їхній здатності взаємодіяти з тканинами, пов'язаними з суглобами, що призводить до зменшення болю в суглобах [8].

КоріньСапошніковія диварічнаШишкін (Umbelliferae) широко використовується в традиційній медицині для лікування головного болю, болю, запалення та артриту в Кореї та Китаї [9,10Різноманітні фармакологічні ефектиСапошніковія диварічна(СД) також включають протизапальні, знеболювальні, жарознижувальні та протиартритні властивості [9,11]. Нещодавнє дослідження продемонструвало, що екстракт хромону SD має потенційні протиревматоїдні ефекти при артриті на мишачій моделі колаген-індукованого артриту [10]; однак, було проведено мало досліджень, які б підтверджували протизапальну та протиартритну активністьСапошніковія диварічнаекстракт (СДЕ).

Таким чином, у цьому дослідженні досліджували протизапальну та протиостеоартритну активність 70% етанольного екстракту SD. Спочатку було оцінено протизапальний ефект SDE.у пробірціу клітинах RAW 264.7, індукованих LPS. Далі, антиостеоартритний ефект SDE вимірювали шляхом оцінки розподілу навантаження, деградації суглобового хряща та запальних реакцій у щурячій моделі остеоартриту, індукованого мононатрій йодацетатом (MIA).