-
Органічна олія жожоба холодного віджиму Олія-носій з насіння жожоба для догляду за шкірою
Основними компонентами натуральної олії жожоба є пальмітинова кислота, ерукова кислота, олеїнова кислота та гадолеїнова кислота. Олія жожоба також багата вітамінами, такими як вітамін Е і комплекс вітамінів групи В.
Рідкий рослинний віск жожоба має золотистий колір. Трав'яна олія жожоба має характерний горіховий аромат і є бажаною добавкою до засобів особистої гігієни, таких як креми, макіяж, шампунь тощо. Трав'яну олію жожоба можна наносити безпосередньо на шкіру при сонячних опіках, псоріазі та акне. Чисте масло жожоба також сприяє росту волосся.
-
Натуральна чиста органічна ефірна олія лаванди для ароматерапевтичного догляду за шкірою
Спосіб екстракції або обробки: дистиляція з водяною парою
Частина екстракції дистиляції: квітка
Країна походження: Китай
Застосування: Дифузний/ароматерапія/масаж
Термін придатності: 3 роки
Індивідуальне обслуговування: спеціальна етикетка та коробка або як ваша вимога
Сертифікація: GMPC/FDA/ISO9001/MSDS/COA
-
100% чиста натуральна органічна олія кори Magnoliae Officmalis Cortex Essential Oil для догляду за шкірою
Аромат Hou Po відразу стає гірким і гострим, а потім поступово відкривається глибокою сиропоподібною солодкістю та теплом.
Спорідненість Хоу По пов’язана з елементами Землі та металу, де його гірке тепло діє сильно, знижуючи Ци та висушуючи вогкість. Завдяки цим властивостям він використовується в китайській медицині для полегшення застою та накопичення в травному тракті, а також кашлю та хрипів, викликаних мокротою, що закупорює легені.
Magnolia Officinials — це листяне дерево, яке поширене в горах і долинах Сичуані, Хубея та інших провінцій Китаю. Надзвичайно ароматна кора, яка використовується в традиційній китайській медицині, знімається зі стебел, гілок і коренів, які збираються з квітня по червень. Товста, гладка кора, насичена маслом, має пурпурний колір з внутрішньої сторони з кристалічним блиском.
Практики можуть розглянути можливість поєднання Hou Po з ефірною олією Qing Pi як комплімент верхньої ноти в сумішах, спрямованих на розщеплення накопичень.
-
Натуральна олія кореневища Macrocephalae
Як ефективний хіміотерапевтичний засіб 5-фторурацил (5-ФУ) широко застосовується для лікування злоякісних пухлин шлунково-кишкового тракту, голови, шиї, грудної клітки та яєчників. А 5-ФУ є препаратом першої лінії при колоректальному раку в клініці. Механізм дії 5-ФУ полягає в блокуванні трансформації нуклеїнової кислоти урацилу в нуклеїнову кислоту тиміну в пухлинних клітинах, а потім у впливі на синтез і відновлення ДНК і РНК для досягнення цитотоксичного ефекту (Afzal та ін., 2009; Ducreux та ін., 2015; Лонглі та ін., 2003). Однак 5-FU також викликає діарею, спричинену хіміотерапією (CID), одну з найпоширеніших побічних реакцій, яка турбує багатьох пацієнтів (Filho et al., 2016). Частота діареї у пацієнтів, які отримували 5-ФУ, становила до 50–80%, що серйозно вплинуло на прогрес та ефективність хіміотерапії (Iacovelli та ін., 2014; Rosenoff та ін., 2006). Отже, дуже важливо знайти ефективну терапію CID, індукованого 5-FU.
В даний час немедикаментозні втручання та медикаментозні втручання були імпортовані в клінічне лікування CID. Немедикаментозне втручання включає розумну дієту та доповнення до солі, цукру та інших поживних речовин. Такі препарати, як лоперамід і октреотид, зазвичай використовуються в протидіарейній терапії ХІН (Benson et al., 2004). Крім того, у різних країнах етномедицина також використовується для лікування CID за допомогою власної унікальної терапії. Традиційна китайська медицина (ТКМ) є типовою етномедициною, яка практикується більше 2000 років у країнах Східної Азії, включаючи Китай, Японію та Корею (Qi et al., 2010). TCM стверджує, що хіміотерапевтичні препарати викликають споживання Ци, дефіцит селезінки, дисгармонію шлунка та ендофітну вологість, що призводить до провідної дисфункції кишечника. Згідно з теорією традиційної китайської медицини, стратегія лікування ХІЗ повинна в основному залежати від доповнення Qi та зміцнення селезінки (Wang et al., 1994).
Висушені корінняAtractylodes macrocephalaКоідз. (AM) іПанакс женьшеньК. А. Мей. (PG) є типовими фітопрепаратами в ТКМ з однаковими ефектами доповнення Ци та зміцнення селезінки (Li et al., 2014). AM і PG зазвичай використовуються як пара трав (найпростіша форма сумісності китайських трав) з ефектом доповнення Qi та зміцнення селезінки для лікування діареї. Наприклад, AM і PG були задокументовані в класичних протидіарейних формулах, таких як Shen Ling Bai Zhu San, Si Jun Zi Tang зТайпін Хуімін Хедзі Джу Фанг(династія Сун, Китай) і Бу Чжун І Ці Тан зПі Вей Лун(династія Юань, Китай) (рис. 1). Кілька попередніх досліджень повідомляли, що всі три формули мають здатність полегшувати CID (Bai та ін., 2017; Чен та ін., 2019; Гоу та ін., 2016). Крім того, наше попереднє дослідження показало, що Shenzhu Capsule, яка містить лише AM і PG, потенційно впливає на лікування діареї, коліту (синдрому xiexie) та інших шлунково-кишкових захворювань (Feng et al., 2018). Однак жодне дослідження не обговорювало ефект і механізм АМ і ПГ у лікуванні КІН, незалежно від того, у комбінації чи окремо.
Зараз кишкова мікробіота вважається потенційним фактором у розумінні терапевтичного механізму ТКМ (Feng та ін., 2019). Сучасні дослідження показують, що кишкова мікробіота відіграє вирішальну роль у підтримці кишкового гомеостазу. Здорова мікробіота кишечника сприяє захисту слизової оболонки кишечника, метаболізму, імунному гомеостазу та відповіді, а також придушенню патогенів (Thursby and Juge, 2017; Pickard et al., 2017). Порушена кишкова мікробіота прямо чи опосередковано порушує фізіологічні та імунні функції організму людини, викликаючи такі побічні реакції, як діарея (Patel et al., 2016; Zhao and Shen, 2010). Дослідження показали, що 5-FU помітно змінив структуру кишкової мікробіоти у мишей з діареєю (Li et al., 2017). Таким чином, вплив AM і PM на діарею, спричинену 5-FU, може бути опосередкований кишковою мікробіотою. Проте, чи можуть АМ і PG окремо та в комбінації запобігти діареї, спричиненій 5-ФУ, шляхом модуляції кишкової мікробіоти, досі невідомо.
Для того, щоб дослідити ефекти проти діареї та основний механізм AM і PG, ми використовували 5-FU для моделювання моделі діареї у мишей. Тут ми зосередилися на потенційних ефектах одноразового та комбінованого введення (АП).Atractylodes macrocephalaефірна олія (АМО) іПанакс женьшеньзагальні сапоніни (PGS), активні компоненти відповідно екстраговані з AM і PG, на діарею, патологію кишечника та мікробну структуру після хіміотерапії 5-FU.
-
100% чиста натуральна олія Eucommiae Foliuml Ефірна олія для догляду за шкірою
Eucommia ulmoides(ЄС) (китайською мовою зазвичай називають «Ду Чжун») належать до сімейства Eucommiaceae, роду невеликих дерев, що походять із Центрального Китаю [1]. Ця рослина широко культивується в Китаї у великих масштабах через її лікувальне значення. З ЄС було виділено близько 112 сполук, які включають лігнани, іридоїди, феноли, стероїди та інші сполуки. Додаткова трав’яна формула цієї рослини (наприклад, смачний чай) виявила деякі лікувальні властивості. Лист ЕС має вищу активність, пов'язану з корою, квіткою та плодом [2,3]. Повідомлялося, що листя ЄС покращує міцність кісток і м’язи тіла [4], що призводить до довголіття та сприяння фертильності у людей [5]. Повідомлялося, що смачна чайна формула, виготовлена з листя ЄС, зменшує жирність і покращує енергетичний обмін. Повідомлялося, що флавоноїдні сполуки (такі як рутин, хлорогенова кислота, ферулова кислота та кавова кислота) виявляють антиоксидантну активність у листі EU [6].
Незважаючи на те, що було достатньо літератури про фітохімічні властивості EU, мало досліджень про фармакологічні властивості різних сполук, витягнутих із кори, насіння, стебел і листя EU. У цьому оглядовому документі буде надано детальну інформацію про різні сполуки, витягнуті з різних частин (кори, насіння, стебла та листя) ЄС, а також про перспективне використання цих сполук у корисних для здоров’я властивостях із науковими доказами та, таким чином, надасть довідковий матеріал для застосування ЄС.
-
Чиста натуральна олія Houttuynia cordata Oil Houttuynia Cordata Oil Lchthammolum Oil
У більшості країн, що розвиваються, 70-95% населення покладаються на традиційну медицину для первинної медичної допомоги, і з цих 85% людей використовують рослини або їх екстракти як активну речовину.[1] Пошук нових біологічно активних сполук із рослин зазвичай залежить від конкретної етнічної та народної інформації, отриманої від місцевих практиків, і все ще вважається важливим джерелом для відкриття ліків. В Індії приблизно 2000 препаратів рослинного походження.[2] Зважаючи на широкий інтерес до використання лікарських рослин, даний огляд наХауттюнія серцелистаThunb. надає найновішу інформацію з посиланням на ботанічні, комерційні, етнофармакологічні, фітохімічні та фармакологічні дослідження, які з’являються в літературі.H. cordataThunb. належить родиніЗавруковіі широко відомий як хвіст китайської ящірки. Це багаторічна трав'яниста рослина зі столоподібним кореневищем, яка має два різних хемотипу.[3,4] Китайський хемотип виду зустрічається в диких і напівдиких умовах на північному сході Індії з квітня по вересень.[5,6,7]H. cordataдоступний в Індії, особливо в долині Брахмапутра в Ассамі, і традиційно використовується різними племенами Ассама як у вигляді овочів, так і в різних лікувальних цілях.
-
100% чиста олія Arctium lappa Виробник – натуральна олія лайму Arctium lappa із сертифікатами якості
Користь для здоров'я
Корінь лопуха часто їдять, але його також можна висушити і заварювати в чаї. Він добре працює як джерело інуліну, aпребіотикклітковина, яка сприяє травленню та покращує здоров’я кишечника. Крім того, цей корінь містить флавоноїди (живильні речовини для рослин),фітохімікати, а також антиоксиданти, які, як відомо, мають користь для здоров’я.
Крім того, корінь лопуха може надати інші переваги, такі як:
Зменшити хронічне запалення Корінь лопуха містить низку антиоксидантів, таких як кверцетин, фенольні кислоти та лютеолін, які можуть допомогти захистити ваші клітини відвільні радикали. Ці антиоксиданти допомагають зменшити запалення в усьому тілі.
Ризики для здоров'я
Корінь лопуха вважається безпечним для вживання або пиття як чай. Однак ця рослина дуже нагадує рослини беладони пасльонових, які є токсичними. Рекомендується купувати корінь лопуха тільки у перевірених продавців і утримуватися від самостійного збору. Крім того, є мінімальна інформація про його вплив на дітей або вагітних жінок. Поговоріть зі своїм лікарем, перш ніж використовувати корінь лопуха дітям або якщо ви вагітні.
Ось деякі інші можливі ризики для здоров’я, які слід враховувати при використанні кореня лопуха:
Підвищене зневоднення
Корінь лопуха діє як природний сечогінний засіб, що може призвести до зневоднення. Якщо ви приймаєте водяні таблетки або інші сечогінні засоби, не можна приймати корінь лопуха. Якщо ви приймаєте ці ліки, важливо знати про інші препарати, трави та інгредієнти, які можуть призвести до зневоднення.
Алергічна реакція
Якщо ви чутливі або в анамнезі були алергічні реакції на маргаритки, амброзію або хризантеми, у вас підвищений ризик алергічної реакції на корінь лопуха.
-
Оптова оптова ціна 100% Pure AsariRadix Et Rhizoma oil Relax Aromatherapy Eucalyptus globulus
Дослідження на тваринах і in vitro досліджували потенційні протигрибкові, протизапальні та серцево-судинні ефекти сасафрасу та його компонентів. Однак клінічні випробування відсутні, і сасафрас не вважається безпечним для використання. Сафрол, основний компонент кори та олії кореня сасафрасу, був заборонений Управлінням з контролю за якістю харчових продуктів і медикаментів США (FDA), в тому числі для використання як ароматизатора або ароматизатора, і не повинен використовуватися внутрішньо або зовнішньо, оскільки він є потенційно канцерогенним. Сафрол використовувався для незаконного виробництва 3,4-метилендіоксиметамфетаміну (МДМА), також відомого під вуличними назвами «екстазі» або «Моллі», а продаж сафролової та сасафрасової олії контролюється Управлінням з контролю за наркотиками США.
-
Оптова оптова ціна 100% чиста ефірна олія Stellariae Radix (нова) Relax Ароматерапія Eucalyptus globulus
Китайська фармакопея (видання 2020 р.) вимагає, щоб метанольний екстракт YCH не був меншим за 20,0% [2], інші показники оцінки якості не вказані. Результати цього дослідження показують, що вміст метанолових екстрактів диких і культивованих зразків відповідав стандарту фармакопеї, і між ними не було істотної різниці. Таким чином, не було очевидної різниці в якості між дикими та культивованими зразками, відповідно до цього індексу. Проте вміст загальних стеринів і загальних флавоноїдів у диких зразках був значно вищим, ніж у культивованих. Подальший метаболомічний аналіз виявив велику різноманітність метаболітів між дикими та культивованими зразками. Крім того, було відібрано 97 істотно різних метаболітів, які перераховані вДодаткова таблиця S2. Серед цих суттєво різних метаболітів є β-ситостерин (ID — M397T42) і похідні кверцетину (M447T204_2), які, як повідомляється, є активними інгредієнтами. Раніше невідомі компоненти, такі як тригонеллін (M138T291_2), бетаїн (M118T277_2), фустин (M269T36), ротенон (M241T189), арктиїн (M557T165) і логанова кислота (M399T284_2), також були включені до диференціальних метаболітів. Ці компоненти відіграють різні ролі в антиоксидантній, протизапальній, поглинанні вільних радикалів, протираковій терапії та лікуванні атеросклерозу і, отже, можуть становити передбачувані нові активні компоненти в YCH. Вміст діючих речовин визначає ефективність і якість лікарських речовин [7]. Підводячи підсумок, метанольний екстракт як єдиний індекс оцінки якості YCH має деякі обмеження, і більш конкретні маркери якості потребують подальшого вивчення. Були значні відмінності в загальних стеролах, загальних флавоноїдах і вмісті багатьох інших диференціальних метаболітів між диким і культивованим YCH; отже, потенційно між ними були певні якісні відмінності. У той же час, нещодавно виявлені потенційні активні інгредієнти в YCH можуть мати важливе довідкове значення для вивчення функціональної основи YCH і подальшого розвитку ресурсів YCH.
Важливість справжніх лікарських матеріалів давно визнана в певному регіоні походження для виробництва китайських трав’яних ліків відмінної якості [8]. Висока якість є неодмінною ознакою справжніх лікарських матеріалів, а середовище проживання є важливим фактором, що впливає на якість таких матеріалів. З тих пір, як YCH почали використовувати як ліки, у ньому довгий час домінував дикий YCH. Після успішного впровадження та одомашнення YCH у Нінся у 1980-х роках, джерело лікарських матеріалів Yinchaihu поступово перейшло з дикого YCH на культивований. Згідно з попереднім розслідуванням джерел YCH [9] і польових досліджень нашої дослідницької групи, існують суттєві відмінності в ареалах поширення культивованих і дикорослих лікарських матеріалів. Дикий YCH в основному поширений в Нінся-Хуейському автономному районі провінції Шеньсі, що прилягає до посушливої зони Внутрішньої Монголії та центральної Нінся. Зокрема, пустельний степ на цих територіях є найбільш придатним середовищем для зростання YCH. Навпаки, культивований YCH в основному поширений на південь від дикої зони поширення, наприклад, у повіті Тунсінь (культивований I) та його прилеглих районах, який став найбільшою культиваційною та виробничою базою в Китаї, а також у повіті Pengyang (культивований II) , який розташований у південнішому районі та є ще одним районом виробництва культивованого YCH. Крім того, місцезростання цих двох культивованих територій не є пустельним степом. Тому, крім способу виробництва, існують також значні відмінності в середовищі існування дикого та культивованого YCH. Середовище існування є важливим фактором, що впливає на якість рослинної лікарської сировини. Різні середовища існування впливатимуть на утворення та накопичення вторинних метаболітів у рослинах, тим самим впливаючи на якість лікарських засобів [10,11]. Таким чином, значні відмінності у вмісті загальних флавоноїдів і загальних стеролів, а також експресії 53 метаболітів, які ми знайшли в цьому дослідженні, можуть бути результатом польового менеджменту та відмінностей середовищ існування.Одним із основних способів впливу навколишнього середовища на якість лікарських матеріалів є вплив на вихідні рослини. Помірний екологічний стрес, як правило, стимулює накопичення вторинних метаболітів [12,13]. Гіпотеза балансу зростання/диференціації стверджує, що, коли поживних речовин достатньо, рослини в основному ростуть, тоді як при дефіциті поживних речовин рослини переважно диференціюються та виробляють більше вторинних метаболітів [14]. Посуховий стрес, викликаний дефіцитом води, є основним екологічним стресом, з яким стикаються рослини в посушливих районах. У цьому дослідженні водний стан культивованого YCH є більш рясним, з річними рівнями опадів, значно вищими, ніж для дикого YCH (водопостачання для культивованого I було приблизно в 2 рази більше, ніж для дикого; культивованого II було приблизно в 3,5 рази більше, ніж для дикого ). Крім того, ґрунт у дикому середовищі є піщаним ґрунтом, але ґрунт на сільськогосподарських угіддях є глинистим. Порівняно з глинистим, піщаний ґрунт має слабку водоутримувальну здатність і, швидше за все, посилить стрес від посухи. Водночас процес вирощування часто супроводжувався поливами, тому ступінь посухового стресу був низьким. Дикий YCH росте в суворих природних посушливих середовищах існування, і тому може зазнати серйознішого стресу від посухи.Осморегуляція є важливим фізіологічним механізмом, за допомогою якого рослини справляються зі стресом від посухи, а алкалоїди є важливими осмотичними регуляторами у вищих рослин [15]. Бетаїни є водорозчинними алкалоїдами четвертинних амонієвих сполук і можуть діяти як осмопротектори. Посуховий стрес може знизити осмотичний потенціал клітин, тоді як осмопротектори зберігають і підтримують структуру та цілісність біологічних макромолекул, а також ефективно полегшують шкоду, спричинену посуховим стресом рослинам [16]. Наприклад, під час посухи вміст бетаїну в цукровому буряку та Lycium barbarum значно збільшився [17,18]. Тригонеллін є регулятором росту клітин, і під час стресу від посухи він може подовжувати тривалість клітинного циклу рослин, пригнічувати ріст клітин і призводити до зменшення об’єму клітин. Відносне збільшення концентрації розчиненої речовини в клітині дозволяє рослині досягти осмотичної регуляції та підвищити її здатність протистояти посуховому стресу [19]. JIA X [20] виявили, що зі збільшенням посухового стресу Astragalus membranaceus (джерело традиційної китайської медицини) виробляє більше тригонеліну, який регулює осмотичний потенціал і покращує здатність протистояти посуховому стресу. Було також показано, що флавоноїди відіграють важливу роль у стійкості рослин до посухового стресу [21,22]. Велика кількість досліджень підтвердила, що помірний стрес від посухи сприяв накопиченню флавоноїдів. Lang Duo-Yong та ін. [23] порівнювали вплив посухового стресу на YCH шляхом контролю водоутримуючої здатності в полі. Було виявлено, що посуховий стрес певною мірою пригнічував ріст коренів, але при помірному та сильному посуховому стресі (40% польової водоутримуючої здатності) загальний вміст флавоноїдів у YCH збільшився. Тим часом під час посухового стресу фітостероли можуть регулювати текучість і проникність клітинних мембран, пригнічувати втрату води та підвищувати стійкість до стресу [24,25]. Таким чином, підвищене накопичення загальних флавоноїдів, загальних стеролів, бетаїну, тригонеліну та інших вторинних метаболітів у дикому YCH може бути пов’язане з високоінтенсивним стресом від посухи.У цьому дослідженні було проведено аналіз збагачення шляху KEGG для метаболітів, які, як було виявлено, значно відрізняються між диким і культивованим YCH. Збагачені метаболіти включали метаболіти, залучені в метаболізм аскорбату та альдарату, біосинтез аміноацил-тРНК, метаболізм гістидину та метаболізм бета-аланіну. Ці метаболічні шляхи тісно пов’язані з механізмами стійкості рослин до стресу. Серед них метаболізм аскорбату відіграє важливу роль у виробництві рослинними антиоксидантами, метаболізмі вуглецю та азоту, стресостійкості та інших фізіологічних функціях [26]; Біосинтез аміноацил-тРНК є важливим шляхом утворення білка [27,28], який бере участь у синтезі стресостійких білків. І гістидиновий, і β-аланіновий шляхи можуть підвищити стійкість рослин до стресу навколишнього середовища [29,30]. Це додатково вказує на те, що відмінності в метаболітах між диким і культивованим YCH були тісно пов'язані з процесами стійкості до стресу.Грунт є матеріальною основою для росту і розвитку лікарських рослин. Азот (N), фосфор (P) і калій (K) у ґрунті є важливими поживними елементами для росту та розвитку рослин. Органічна речовина ґрунту також містить N, P, K, Zn, Ca, Mg та інші необхідні для лікарських рослин макроелементи і мікроелементи. Надлишок або дефіцит поживних речовин або незбалансоване співвідношення поживних речовин вплинуть на ріст і розвиток, а також на якість лікарських матеріалів, і різні рослини мають різні потреби в поживних речовинах [31,32,33]. Наприклад, низький рівень N сприяв синтезу алкалоїдів у Isatis indigotica та сприяв накопиченню флавоноїдів у таких рослинах, як Tetrastigma hemsleyanum, Crataegus pinnatifida Bunge та Dichondra repens Forst. Навпаки, занадто велика кількість азоту пригнічує накопичення флавоноїдів у таких видах, як Erigeron breviscapus, Abrus cantoniensis і Ginkgo biloba, і впливає на якість лікарських матеріалів.34]. Застосування Р-добрива виявилося ефективним для підвищення вмісту гліциризинової кислоти та дигідроацетону в солодці уральській [35]. Коли кількість нанесення перевищувала 0·12 кг·м−2, загальний вміст флавоноїдів у Tussilago farfara зменшувався [36]. Застосування P-добрива негативно вплинуло на вміст полісахаридів у традиційній китайській медицині rhizoma polygonati [37], але добриво K було ефективним у збільшенні вмісту сапонінів [38]. Застосування добрива 450 кг·год-2 K було найкращим для росту та накопичення сапоніну дворічного Panax notoginseng [39]. При співвідношенні N:P:K = 2:2:1 загальна кількість гідротермального екстракту, гарпагіду та гарпагозиду була найбільшою [40]. Високе співвідношення N, P і K було корисним для сприяння росту Pogostemon cablin і збільшення вмісту летючої олії. Низьке співвідношення N, P і K підвищило вміст основних ефективних компонентів олії листя стебла Pogostemon cablin [41]. YCH є рослиною, стійкою до безплідного ґрунту, і вона може мати особливі вимоги до поживних речовин, таких як N, P і K. У цьому дослідженні, порівняно з культивованим YCH, ґрунт диких рослин YCH був відносно безплідним: вміст ґрунту органічної речовини загальний N, загальний P і загальний K становили приблизно 1/10, 1/2, 1/3 і 1/3 від культурних рослин відповідно. Таким чином, відмінності в поживних речовинах ґрунту можуть бути ще однією причиною відмінностей між метаболітами, виявленими в культивованому та дикому YCH. Вейбао Ма та ін. [42] виявили, що внесення певної кількості азотних добрив і фосфорних добрив значно покращує врожайність і якість насіння. Однак вплив поживних елементів на якість YCH не ясний, і заходи з удобрення для покращення якості лікарських матеріалів потребують подальшого вивчення.Китайські трав’яні ліки мають такі характеристики: «Сприятливі середовища проживання сприяють урожаю, а несприятливі покращують якість» [43]. У процесі поступового переходу від диких до культивованих YCH середовище проживання рослин змінилося з посушливих і безплідних пустельних степів на родючі сільськогосподарські угіддя з більшою кількістю води. Середовище існування культивованого YCH є кращим, а врожайність вищою, що допомагає задовольнити ринковий попит. Однак це чудове середовище існування призвело до значних змін у метаболітах YCH; чи сприяє це покращенню якості YCH і як досягти високоякісного виробництва YCH за допомогою науково обґрунтованих заходів вирощування, потребують подальших досліджень.Симуляційне культивування в середовищі існування — це метод моделювання середовища існування та умов навколишнього середовища дикорослих лікарських рослин, заснований на знанні довготривалої адаптації рослин до специфічних екологічних стресів [43]. Моделюючи різні фактори навколишнього середовища, які впливають на дикі рослини, особливо вихідне середовище проживання рослин, які використовуються як джерела справжніх лікарських матеріалів, цей підхід використовує науковий дизайн та інноваційне людське втручання, щоб збалансувати ріст і вторинний метаболізм китайських лікарських рослин [43]. Метод спрямований на досягнення оптимальних механізмів для розробки високоякісних лікарських матеріалів. Симулятивне культивування середовища існування повинно забезпечити ефективний спосіб високоякісного виробництва YCH, навіть коли фармакодинамічна основа, маркери якості та механізми відповіді на фактори навколишнього середовища неясні. Відповідно, ми пропонуємо, щоб науковий дизайн і заходи з управління полями при вирощуванні та виробництві YCH мали здійснюватися з урахуванням екологічних характеристик дикого YCH, таких як посушливі, безплідні та піщані ґрунтові умови. У той же час є також надія, що дослідники проведуть більш поглиблені дослідження функціональної матеріальної основи та маркерів якості YCH. Ці дослідження можуть забезпечити більш ефективні критерії оцінки для YCH, а також сприяти високоякісному виробництву та сталому розвитку галузі. -
Трав'яна олія Fructus Amomi Натуральний масаж Дифузори 1 кг Маса Amomum villosum Ефірна олія
Сімейство Zingiberaceae привертає все більшу увагу в алелопатичних дослідженнях через насиченість леткими оліями та ароматність видів, що входять до нього. Попередні дослідження показали, що хімічні речовини з Curcuma cedoaria (zedoary) [40], Alpinia zerumbet (Pers.) BLBurtt & RMSm. [41] і Zingiber officinale Rosc. [42] родини імбирних мають алелопатичний вплив на проростання насіння та ріст розсади кукурудзи, салату та томатів. Наше поточне дослідження є першим звітом про алелопатичну активність летких речовин зі стебел, листя та молодих плодів A. villosum (представника сімейства Zingiberaceae). Вихід олії в стеблах, листках і молодих плодах становив 0,15%, 0,40% і 0,50% відповідно, що вказує на те, що плоди виробляли більшу кількість летких олій, ніж стебла і листя. Основними компонентами летких олій із стебел були β-пінен, β-фелландрен і α-пінен, які були схожі на структуру основних хімічних речовин листової олії, β-пінен і α-пінен (монотерпенові вуглеводні). З іншого боку, олія в молодих плодах була багата на борнілацетат і камфору (кисневі монотерпени). Результати були підтверджені висновками Do N Dai [30,32] і Хуей Ао [31], який ідентифікував олії з різних органів A. villosum.
Було кілька повідомлень про пригнічувальну дію цих основних сполук на ріст рослин інших видів. Шаліндер Каур виявив, що α-пінен з евкаліпта помітно пригнічує довжину коренів і висоту пагонів Amaranthus viridis L. при концентрації 1,0 мкл [43], а інше дослідження показало, що α-пінен пригнічує ранній ріст коренів і спричиняє окисне пошкодження кореневої тканини через збільшення утворення активних форм кисню [44]. У деяких звітах стверджується, що β-пінен пригнічує проростання та ріст досліджуваних бур’янів залежно від дози, порушуючи цілісність мембрани.45], змінюючи біохімію рослин і посилюючи активність пероксидаз і поліфенолоксидаз [46]. β-Фелландрен продемонстрував максимальне пригнічення проростання та росту Vigna unguiculata (L.) Walp у концентрації 600 ppm [47], тоді як у концентрації 250 мг/м3 камфора пригнічувала ріст корінців і пагонів Lepidium sativum L. [48]. Однак досліджень, що повідомляють про алелопатичний ефект борнілацетату, мало. У нашому дослідженні алелопатичні ефекти β-пінену, борнілацетату та камфори на довжину коренів були слабшими, ніж для летких олій, за винятком α-пінену, тоді як листова олія, багата α-піненом, також була більш фітотоксичною, ніж відповідна фітонцид. олії зі стебел і плодів A. villosum, обидва висновки вказують на те, що α-пінен може бути важливою хімічною речовиною для алелопатії цього виду. У той же час результати також показали, що деякі сполуки у фруктовій олії, яких не було у великій кількості, можуть сприяти виробленню фітотоксичного ефекту, відкриття, яке потребує подальших досліджень у майбутньому.За нормальних умов алелопатичний ефект алелохімікатів є видоспецифічним. Jiang та ін. виявили, що ефірна олія, яку виробляє Artemisia sieversiana, має сильніший вплив на Amaranthus retroflexus L., ніж на Medicago sativa L., Poa annua L. і Pennisetum alopecuroides (L.) Spreng. [49]. В іншому дослідженні летка олія Lavandula angustifolia Mill. виробляли різний ступінь фітотоксичної дії на різні види рослин. Lolium multiflorum Lam. був найбільш чутливим акцепторним видом, ріст гіпокотилю та корінця пригнічувався на 87,8% та 76,7% відповідно при дозі 1 мкл/мл олії, але ріст гіпокотилю проростків огірка майже не впливав [20]. Наші результати також показали, що існує різниця в чутливості до летючих речовин A. villosum між L. sativa і L. perenne.Летючі сполуки та ефірні олії одного виду можуть відрізнятися кількісно та/або якісно через умови росту, частини рослини та методи виявлення. Наприклад, звіт продемонстрував, що піраноід (10,3%) і β-каріофілен (6,6%) були основними сполуками летких речовин, що виділяються з листя Sambucus nigra, тоді як бензальдегід (17,8%), α-булнесен (16,6%) і тетракозан (11,5%) були у великій кількості в оліях, отриманих з листя [50]. У нашому дослідженні леткі сполуки, що виділяються свіжими рослинними матеріалами, мали сильніший алелопатичний вплив на досліджувані рослини, ніж екстраговані леткі олії, відмінності у реакції були тісно пов’язані з відмінностями в алелохімічних речовинах, присутніх у двох препаратах. Точні відмінності між леткими сполуками та оліями необхідно додатково дослідити в наступних експериментах.Відмінності в мікробному різноманітті та структурі мікробної спільноти в зразках ґрунту, до яких були додані леткі олії, були пов’язані з конкуренцією між мікроорганізмами, а також з будь-якими токсичними ефектами та тривалістю перебування летких олій у ґрунті. Воку та Ліотірі [51] виявили, що відповідне застосування чотирьох ефірних олій (0,1 мл) до культивованого ґрунту (150 г) активувало дихання зразків ґрунту, навіть олії відрізнялися за своїм хімічним складом, що свідчить про те, що рослинні олії використовуються як джерело вуглецю та енергії ґрунтові мікроорганізми. Дані, отримані в ході поточного дослідження, підтвердили, що олії з цілої рослини A. villosum сприяли очевидному збільшенню кількості видів ґрунтових грибів на 14-й день після додавання олії, вказуючи на те, що олія може бути джерелом вуглецю для більшої кількості. ґрунтові гриби. Інше дослідження повідомило про висновок: ґрунтові мікроорганізми відновили свою початкову функцію та біомасу після тимчасового періоду коливань, викликаного додаванням олії Thymbra capitata L. (Cav), але олія у найвищій дозі (0,93 мкл олії на грам ґрунту) не дозволяла ґрунтовим мікроорганізмам відновити початкову функціональність [52]. У поточному дослідженні, заснованому на мікробіологічному аналізі ґрунту після обробки різними днями та концентраціями, ми припустили, що бактеріальна спільнота ґрунту відновиться через кілька днів. Навпаки, грибкова мікробіота не може повернутися до свого початкового стану. Наступні результати підтверджують цю гіпотезу: чіткий вплив високої концентрації олії на склад мікробіому грибів у ґрунті було виявлено за допомогою аналізу головних координат (PCoA), а представлення теплової карти ще раз підтвердило, що склад грибних угруповань у ґрунті оброблені 3,0 мг/мл олії (а саме 0,375 мг олії на грам ґрунту) на рівні роду значно відрізнялися від інших обробок. В даний час дослідження впливу додавання монотерпенових вуглеводнів або оксигенованих монотерпенів на мікробне різноманіття ґрунту та структуру спільноти все ще є недостатніми. Кілька досліджень показали, що α-пінен підвищує мікробну активність ґрунту та відносну кількість Methylophilaceae (група метилотрофів, протеобактерій) за низького вмісту вологи, відіграючи важливу роль як джерело вуглецю в більш сухих ґрунтах.53]. Аналогічно, летка олія цілої рослини A. villosum, що містить 15,03% α-пінену (Додаткова таблиця S1), очевидно, збільшив відносну кількість протеобактерій на 1,5 мг/мл і 3,0 мг/мл, що свідчить про те, що α-пінен, можливо, діє як одне з джерел вуглецю для ґрунтових мікроорганізмів.Летючі сполуки, що виробляються різними органами A. villosum, мали різний ступінь алелопатичної дії на L. sativa та L. perenne, що було тісно пов’язане з хімічними компонентами, які містили частини рослин A. villosum. Хоча хімічний склад леткої олії було підтверджено, леткі сполуки, які виділяє A. villosum при кімнатній температурі, невідомі, що потребує подальшого дослідження. Крім того, синергетичний ефект між різними алелохімічними речовинами також заслуговує на увагу. З точки зору ґрунтових мікроорганізмів, щоб всебічно вивчити вплив леткої олії на ґрунтові мікроорганізми, нам все ще потрібно провести більш глибокі дослідження: подовжити час обробки леткої олії та розпізнати варіації хімічного складу леткої олії в ґрунті в різні дні. -
Чиста олія Artemisia capillaris для виготовлення свічок і мила, ефірна олія оптового дифузора, нове для дифузорів для пальників.
Дизайн моделі гризуна
Тварин випадковим чином розділили на п'ять груп по п'ятнадцять мишей у кожній. Мишам контрольної групи та модельної групи вводили зондкунжутної оліїпротягом 6 днів. Мишам групи позитивного контролю вводили таблетки біфендату (BT, 10 мг/кг) протягом 6 днів. Експериментальні групи отримували 100 мг/кг і 50 мг/кг AEO, розчинених у кунжутній олії, протягом 6 днів. На 6 день контрольну групу вводили кунжутною олією, а всі інші групи отримували одноразову дозу 0,2% CCl4 у кунжутній олії (10 мл/кг)внутрішньоочеревинна ін'єкція. Потім мишей голодували без води і відбирали зразки крові з ретробульбарних судин; зібрану кров центрифугували при 3000 ×gпротягом 10 хв для відділення сироватки.Вивих шийки маткибуло виконано відразу після забору крові, а зразки печінки були негайно вилучені. Одну частину зразка печінки негайно зберігали при -20 °C до аналізу, а іншу частину вирізали та фіксували в 10%формалінрозчин; решту тканин зберігали при -80 °C для гістопатологічного аналізу (Ван та ін., 2008,Хсу та ін., 2009,Ні та ін., 2015).
Вимірювання біохімічних показників у сироватці крові
Пошкодження печінки оцінювали шляхом оцінкиферментативна діяльністьАЛТ і АСТ сироватки за допомогою відповідних комерційних наборів згідно з інструкціями до наборів (Нанкін, провінція Цзянсу, Китай). Ферментативну активність виражали в одиницях на літр (U/l).
Вимірювання MDA, SOD, GSH і GSH-Pxв гомогенатах печінки
Тканини печінки гомогенізували холодним фізіологічним розчином у співвідношенні 1:9 (маса/об’єм, печінка: фізіологічний розчин). Гомогенати центрифугували (2500 ×gпротягом 10 хв), щоб зібрати супернатант для наступних визначень. Пошкодження печінки оцінювали відповідно до печінкових вимірювань рівнів MDA і GSH, а також SOD і GSH-Pxдіяльності. Усі вони були визначені відповідно до інструкцій на наборі (Нанкін, провінція Цзянсу, Китай). Результати для MDA і GSH виражали як нмоль на мг білка (нмоль/мг проти), а активності SOD і GSH-Pxбули виражені як U на мг білка (U/мг протеїну).
Гістопатологічний аналіз
Порції свіжоотриманої печінки фіксували в 10% буферіпараформальдегідрозчин фосфату. Потім зразок заливали в парафін, нарізали на зрізи 3–5 мкм і фарбувалигематоксилініеозин(H&E) відповідно до стандартної процедури та остаточно проаналізованосвітлова мікроскопія(Tian та ін., 2012).
Статистичний аналіз
Результати виражали як середнє ± стандартне відхилення (SD). Результати аналізували за допомогою статистичної програми SPSS Statistics версії 19.0. Дані були піддані дисперсійному аналізу (ANOVA,p< 0,05) з подальшим тестом Даннетта та тестом Даннета T3 для визначення статистично значущих відмінностей між значеннями різних експериментальних груп. Значну різницю вважали на рівніp< 0,05.
Результати та обговорення
Складові AEO
Після аналізу ГХ/МС було виявлено, що AEO містить 25 компонентів, що елююються протягом 10-35 хвилин, і було ідентифіковано 21 компонент, що становить 84% ефірної олії (Таблиця 1). Летюче масло міститьсямонотерпеноїди(80,9%), сесквітерпеноїди (9,5%), насичені нерозгалужені вуглеводні (4,86%) і різний ацетилен (4,86%). Порівняно з іншими дослідженнями (Го та ін., 2004), ми виявили велику кількість монотерпеноїдів (80,90%) в AEO. Результати показали, що найбільш поширеним компонентом AEO є β-цитронелол (16,23%). Інші основні компоненти AEO включають 1,8-цинеол (13,9%),камфора(12,59%),ліналоол(11,33%), α-пінен (7,21%), β-пінен (3,99%),тимол(3,22%) тамірцен(2,02%). Різниця в хімічному складі може бути пов’язана з умовами навколишнього середовища, яким була піддана рослина, такими як мінеральна вода, сонячне світло, стадія розвитку тахарчування.
-
Чиста олія Saposhnikovia divaricata для дифузорів для свічок і миловаріння оптом ефірна олія новинка для дифузорів для язичкових пальників
2.1. Підготовка СДЕ
Кореневища SD були придбані у вигляді висушеної трави від Hanherb Co. (Гурі, Корея). Рослинні матеріали були підтверджені таксономічно доктором Го-Я Чоєм з Корейського інституту східної медицини (KIOM). Ваучерний зразок (номер 2014 SDE-6) було збережено в Корейському гербарії стандартних рослинних ресурсів. Висушені кореневища SD (320 г) екстрагували двічі 70% етанолом (із зворотним холодильником протягом 2 годин), а потім екстракт концентрували при зниженому тиску. Відвар проціджують, ліофілізують і зберігають при 4°С. Вихід висушеного екстракту з неочищених вихідних матеріалів становив 48,13% (мас./мас.).
2.2. Кількісний аналіз високоефективної рідинної хроматографії (ВЕРХ).
Хроматографічний аналіз проводили за допомогою системи ВЕРХ (Waters Co., Мілфорд, Массачусетс, США) і фотодіодного матричного детектора. Для ВЕРХ-аналізу SDE, первиннийO-глюкозилциміфугін стандарт був придбаний у Корейському інституті сприяння індустрії традиційної медицини (Кьонсан, Корея), ісек-О-глюкозилгамаудол і 4′-O-β-D-глюкозил-5-O-метилвісамінол були виділені в нашій лабораторії та ідентифіковані за допомогою спектрального аналізу, насамперед за допомогою ЯМР та МС.
Зразки SDE (0,1 мг) розчиняли в 70% етанолі (10 мл). Хроматографічне розділення проводили за допомогою колонки XSelect HSS T3 C18 (4,6 × 250 мм, 5μм, Waters Co., Мілфорд, Массачусетс, США). Рухома фаза складалася з ацетонітрилу (А) і 0,1% розчину оцтової кислоти у воді (В) зі швидкістю потоку 1,0 мл/хв. Використовували програму багатокрокового градієнта: 5% А (0 хв), 5–20% А (0–10 хв), 20% А (10–23 хв) і 20–65% А (23–40 хв). ). Довжину хвилі детектування сканували при 210–400 нм і записували при 254 нм. Об'єм ін'єкції становив 10,0μL. Стандартні розчини для визначення трьох хромонів готували в кінцевій концентрації 7,781 мг/мл (прим.O-глюкозилциміфугін), 31,125 мг/мл (4′-O-β-D-глюкозил-5-O-метилвісамінол) і 31,125 мг/мл (сек-О-глюкозилгамаудол) у метанолі та витримували при 4°C.
2.3. Оцінка протизапальної активностіIn Vitro
2.3.1. Культура клітин і обробка зразків
Клітини RAW 264.7 були отримані з Американської колекції типових культур (ATCC, Manassas, VA, USA) і вирощені в середовищі DMEM, що містить 1% антибіотиків і 5,5% FBS. Клітини інкубували у зволоженій атмосфері 5% CO2 при 37°C. Для стимуляції клітин середовище було замінено свіжим середовищем DMEM і ліпополісахаридом (LPS, Sigma-Aldrich Chemical Co., Сент-Луїс, Міссурі, США) при 1°С.μг/мл додавали за наявності або відсутності SDE (200 або 400μг/мл) протягом додаткових 24 годин.
2.3.2. Визначення оксиду азоту (NO), простагландину E2 (PGE2), фактора некрозу пухлин-α(TNF-α) і виробництво інтерлейкіну-6 (IL-6).
Клітини обробляли SDE і стимулювали LPS протягом 24 годин. Продукція NO аналізувалася шляхом вимірювання нітриту за допомогою реактиву Грісса відповідно до попереднього дослідження [12]. Секреція запальних цитокінів PGE2, TNF-α, а IL-6 визначали за допомогою набору ELISA (системи R&D) згідно з інструкціями виробника. Вплив SDE на продукцію NO та цитокінів визначали при 540 нм або 450 нм за допомогою Wallac EnVision™зчитувач мікропланшетів (PerkinElmer).
2.4. Оцінка антиостеоартритної активностіIn Vivo
2.4.1. Тварини
Самці щурів Sprague-Dawley (7 тижнів) були придбані у Samtako Inc. (Осан, Корея) і містилися в контрольованих умовах з 12-годинним циклом світло/темрява при°C і% вологості. Щурів забезпечили лабораторною дієтою та водоюad libitum. Усі експериментальні процедури були виконані відповідно до рекомендацій Національного інституту здоров’я (NIH) і схвалені Комітетом з догляду та використання тварин Теджонського університету (Теджон, Республіка Корея).
2.4.2. Індукція ОА з MIA у щурів
Перед початком дослідження тварин рандомізували та розподіляли на групи лікування (на групу). Розчин MIA (3 мг/50μ0,9% сольового розчину) безпосередньо вводили у внутрішньосуглобовий простір правого коліна під анестезією, індукованою сумішшю кетаміну та ксилазину. Щурів випадковим чином розділили на чотири групи: (1) групу фізіологічного розчину без ін’єкції MIA, (2) групу MIA з ін’єкцією MIA, (3) групу лікування SDE (200 мг/кг) з ін’єкцією MIA та (4) ) група лікування індометацином (ІМ-) (2 мг/кг) з ін’єкцією MIA. Щурам перорально вводили SDE та IM за 1 тиждень до ін’єкції MIA протягом 4 тижнів. Дозування SDE та IM, що використовувалися в цьому дослідженні, ґрунтувалося на тих, які використовувалися в попередніх дослідженнях [10,13,14].
2.4.3. Вимірювання розподілу ваги задньої лапи
Після індукції ОА вихідний баланс у здатності носити вагу задніх лап був порушений. Тестер недієздатності (Linton instrumentation, Норфолк, Великобританія) використовувався для оцінки змін у толерантності до навантаження. Щурів обережно поміщали у вимірювальну камеру. Несучу силу задньої кінцівки усереднювали протягом 3 с. Коефіцієнт розподілу ваги розраховували за таким рівнянням: [вага правої задньої кінцівки/(вага правої задньої кінцівки + вага лівої задньої кінцівки)] × 100 [15].
2.4.4. Вимірювання рівня цитокінів у сироватці крові
Зразки крові центрифугували при 1500 g протягом 10 хв при 4°C; потім сироватку збирали і зберігали при -70°C до використання. Рівні IL-1β, IL-6, TNF-α, і PGE2 у сироватці вимірювали за допомогою наборів ELISA від R&D Systems (Міннеаполіс, Міннесота, США) відповідно до інструкцій виробника.
2.4.5. Кількісний RT-PCR аналіз у реальному часі
Загальну РНК екстрагували з тканини колінного суглоба за допомогою реагенту TRI® (Sigma-Aldrich, Сент-Луїс, Міссурі, США), зворотно транскрибували в кДНК і ампліфікували за допомогою ПЛР-ампліфікації за допомогою набору TM One Step RT PCR з SYBR green (Applied Biosystems). , Гранд-Айленд, Нью-Йорк, США). Кількісну ПЛР у реальному часі проводили за допомогою системи Applied Biosystems 7500 Real-Time PCR (Applied Biosystems, Grand Island, NY, USA). Послідовності праймерів і послідовність зонда показані в табл1. Аликвоти зразків кДНК і рівну кількість кДНК GAPDH ампліфікували за допомогою основної суміші TaqMan® Universal PCR, що містить ДНК-полімеразу відповідно до інструкцій виробника (Applied Biosystems, Фостер, Каліфорнія, США). Умови ПЛР становили 2 хв при 50 °C, 10 хв при 94 °C, 15 с при 95 °C і 1 хв при 60 °C протягом 40 циклів. Концентрацію цільового гена визначали методом порівняння Ct (число порогового циклу в точці перетину між графіком ампліфікації та порогом) відповідно до інструкцій виробника.
